质粒转染实验流程
实验准备
1. 材料：目的质粒、待转染细胞、细胞培养基、无血清培养基、转染试剂、胰酶、PBS缓冲液、抗生素（可选）、细胞培养皿或培养板。
2. 仪器：细胞培养箱、超净工作台、离心机、移液器、显微镜、CO₂培养箱。
实验步骤
细胞准备
1. 在转染前1天，使用胰酶消化处于对数生长期的细胞，用含10%胎牛血清的完全培养基重悬细胞，以合适密度接种于细胞培养皿或培养板中，确保转染时细胞汇合度达到70%-90%。
2. 将细胞置于37℃、5%CO₂的细胞培养箱中培养过夜。
转染复合物制备
1. 取两支无菌离心管，分别标记为A和B。
2. 在A管中加入适量无血清培养基，再加入一定量的质粒DNA，轻轻混匀。具体质粒用量根据细胞类型、转染试剂说明及实验目的确定，一般为1-5μg。
3. 在B管中加入等量无血清培养基，然后按照转染试剂说明书，加入相应体积的转染试剂，轻轻混匀，室温孵育5分钟。
4. 将A管中的DNA溶液逐滴加入B管的转染试剂溶液中，边加边轻轻混匀，室温孵育15 - 30分钟，使转染复合物充分形成。
转染
1. 从细胞培养箱中取出细胞培养皿或培养板，用PBS缓冲液轻轻冲洗细胞2 - 3次，以去除残留的血清。
2. 向细胞中加入适量无血清培养基，使细胞完全浸没，再将制备好的转染复合物逐滴加入细胞培养皿或培养板中，轻轻晃动培养皿或培养板，使转染复合物均匀分布。
3. 将细胞放回37℃、5%CO₂的细胞培养箱中培养4 - 6小时。
更换培养基
1. 转染4 - 6小时后，从细胞培养箱中取出细胞，吸去含有转染复合物的无血清培养基。
2. 向细胞中加入适量含10%胎牛血清的完全培养基，继续在37℃、5%CO₂的细胞培养箱中培养。
结果检测
1. 荧光观察（针对带有荧光标记质粒）：转染24 - 48小时后，在荧光显微镜下观察细胞，统计发出荧光的细胞数量，计算转染效率。
2. 蛋白检测（如Western blot）：转染48 - 72小时后，收集细胞，提取总蛋白，通过Western blot检测目的蛋白表达水平，分析转染效果。
3. mRNA检测（如RT - qPCR）：收集转染后的细胞，提取总RNA，反转录为cDNA后，利用RT - qPCR检测目的基因mRNA表达量变化。
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